home *** CD-ROM | disk | FTP | other *** search
/ HaCKeRz KrOnIcKLeZ 3 / HaCKeRz_KrOnIcKLeZ.iso / drugs / ergot.culture < prev    next >
Text File  |  1996-05-06  |  6KB  |  126 lines

  1.  
  2. Here in alt.drugs have been lot of talk about LSD synthesis lately.
  3. I guess as an conclusion it can be said that the synthesis can be
  4. carried out with good chemistry knowledge and laboratory. Then the
  5. problem is where to get lysergic acid derivative for the synthesis.
  6. The full synthesis of the lysergic acid is too difficult. Lysergic
  7. acid amides can be extracted from the seeds of morning glory or
  8. hawaiian baby wood rose, but it is not practical, because the huge
  9. amount of seeds needed to get enough lysergic acid amides for
  10. the LSD synthesis. To my opinion the only feasible possibility is
  11. to cultivate ergot.
  12.  
  13. What I would like to know is how difficult it is to cultivate
  14. Claviceps purpurea for example. Is it harder than growing psychedelic
  15. mushrooms? Is the following procedure any good and how hard it is
  16. to carry out? Any constructive comments?
  17.  
  18.  
  19. Michael Valentine Smith: Psychedelic Chemistry
  20.  
  21. From pages 105-107:
  22.  
  23. The Culture and Extraction of Ergot Alkaloids
  24.  
  25. Make up a culture medium by combining the following ingredients in about
  26. 500 milliliters of distilled water in a 2 liter, small-neck flask:
  27.  
  28.   Sucrose .......................................... 100 grams
  29.   Chick pea meal .................................... 50 grams
  30.   Calcium nitrate ..................................... 1 gram
  31.   Monopotassium phosphate ......................... 0.25 grams
  32.   Magnesium sulphate .............................. 0.25 grams
  33.   Potassium chloride ............................. 0.125 grams
  34.   Ferrous sulphate heptahydrate ................... 8.34 milligrams
  35.   Zinc sulphate heptahydrate ...................... 3.44 milligrams
  36.  
  37. Add water to make up one liter, adjust pH 4 with ammonia solution and
  38. citric acid. Sterile by autoclaving.
  39.  
  40. Inoculate the sterilized medium with Claviceps purpurea under sterile
  41. conditions, stopper with sterilized cotton and incubate for two weeks
  42. periodically testing and maintaining pH 4. After two weeks a surface
  43. culture will be seen on the medium. Large-scale production of the
  44. fungus can now begin.
  45.  
  46. Obtain several ordinary 1 gallon jugs. Place a two-hole stopper in
  47. the necks of the jugs. Fit a short (6 inch) glass tube in one hole,
  48. leaving 2 inches above the stopper. Fit a short rubber tube to this.
  49. Fill a small (500 milliliter) Erlenmeyer flask with a dilute solution
  50. of sodium hypochlorite, and extend a glass tube from the rubber tube
  51. so the end is immersed in the hypochlorite. Fit a long, glass tube in
  52. the other stopper hole. It must reach near the bottom of the jug and
  53. have about two inches showing above the stopper. Attach a rubber tube
  54. to the glass tube as short or as long as desired, and fit a short glass
  55. tube to the end of the rubber tube. Fill a large, glass tube (1 inch x
  56. 6 inches) with sterile cotton and fit 1-hole stoppers in the ends.
  57. Fit the small, glass tube in end of the rubber tube into 1 stopper of
  58. the large tube. Fit another small glass tube in the other stopper.
  59. A rubber tube is connected to this and attached to a small air pump
  60. obtained from a tropical fish supply store. You now have a set-up for
  61. pumping air from the pump, through the cotton filter, down the long
  62. glass tube in the jug, through the solution to the air space in the top
  63. of the jug, through the short glass tube, down to the bottom of the
  64. Erlenmeyer flask and up through the sodium hypochlorite solution into
  65. the atmosphere. With this aeration equipment you can assure a supply
  66. of clean air to the Claviceps purpurea fungus while maintaining a
  67. sterile atmosphere inside the solution.
  68.  
  69. Dismantle the aerators. Place all the glass tubes, rubber tubes,
  70. stoppers and cotton in a paper bag, seal tight with wire staples
  71. and sterilize in an autoclave.
  72.  
  73. Fill the 1-gallon jugs 2/3 to 3/4 full with the culture medium and
  74. autoclave.
  75.  
  76. While these things are being sterilized, homogenize in a blender the
  77. culture already obtained and use it to inoculate the media in the
  78. gallon jugs. The blender must be sterile. Everything must be sterile.
  79.  
  80. Assemble the aerators. Start the pumps. A slow bubbling in each jug
  81. will provide enough oxygen to the cultures. A single pump can, of
  82. course, be connected to several filters.
  83.  
  84. Let everything sit a room temperature (25 C) in a fairly dark place
  85. (never expose ergot alkaloids to bright light - they decompose) for
  86. a period of ten days.
  87.  
  88. After ten days adjust the culture to 1% ethanol using 95% ethanol
  89. under sterile conditions. Maintain growth for another two weeks.
  90.  
  91. After total of 24 days growth period the culture should be considered
  92. mature. Make the culture acidic with tartaric acid and homogenize in
  93. a blender for one hour.
  94.  
  95. Adjust to pH 9 with ammonium hydroxide and extract with benzene or
  96. chloroform/iso-butanol mixture.
  97.  
  98. Extract again with alcoholic tartaric acid and evaporate in a vacuum
  99. to dryness. The dry material in the salt (i.e., the tartaric acid salt,
  100. the tartrate) of the ergot alkaloids, and is stored in this form because
  101. the free basic material is too unstable and decomposes readily in the
  102. presence of light, heat, moisture and air.
  103.  
  104. To recover the free base for extraction of the amide of synthesis to
  105. LSD, make the tartrate basic with ammonia to pH 9, extract with chloroform
  106. and evaporate in vacuo.
  107.  
  108. If no source of pure Claviceps purpurea fungus can be found, it may be
  109. necessary to make a field trip to obtain the ergot growths from rye or
  110. other cereal grasses. Rye grass is by far the best choice. The ergot will
  111. appear as a blackish growth on the tops of the rye where the seeds are
  112. and are referred to as "heads of ergot." From these heads of ergot sprout
  113. the Claviceps purpurea fungi. They have long steams with bulbous heads when
  114. seen under a strong glass or microscope. It is these that must be removed
  115. from the ergot, free from contamination, and used to inoculate the culture
  116. media. The need for absolute sterility cannot be overstressed. Consult any
  117. elementary text on bacteriology for the correct equipment and procedures.
  118. Avoid prolonged contact with ergot compounds, as they are poisonous and
  119. can be fatal.
  120. -------------------------------------------------------------------------
  121. To find out more about the anon service, send mail to help@anon.penet.fi.
  122. Due to the double-blind system, any replies to this message will be anonymized,
  123. and an anonymous id will be allocated automatically. You have been warned.
  124.  
  125.  
  126.