home *** CD-ROM | disk | FTP | other *** search
/ The Unsorted BBS Collection / thegreatunsorted.tar / thegreatunsorted / texts / txtfiles_misc / shroom.gro < prev    next >
Text File  |  1994-11-20  |  43KB  |  782 lines

  1.  
  2.  
  3.                       THE PSILOCYBIN PRODUCERS GUIDE
  4.                                  ------
  5.              How to produce 5000 doses of organic psilocybin                  
  6.                        in a small room every week                   
  7.                                  ------  
  8.                                    by
  9.                               Adam Gottlieb
  10.                                   1976
  11.  
  12.  
  13.                             
  14.  
  15.                               INTRODUCTION
  16.  
  17.  If a person knows what he is doing, It's not difficult to cultivate
  18.  the mycelium of any of the psychoactive psilocybin bearing mushrooms.
  19.  The mycelium is the fibrous underground network of the mushroom. The
  20.  familiar stem and cap portions of the mushrooms are called carpophores.
  21.  The mycelium can be readily grown in ordinary Mason jars in a low
  22.  cost medium in 10 to 12 days and the active materials (psilocybin
  23.  and psilocin) can be easily extracted. This Guide shows how to carry
  24.  out all of these steps on a small or a large scale. Complete instruc-
  25.  tions are given for locating the mushrooms, developing stock cultures
  26.  for inoculation, cultivating, harvesting, and drying the mycelium,
  27.  extracting the active alkaloids, and using the existing cultures to
  28.  seed new cultures to keep an ongoing psilocybin farm yielding a
  29.  regular crop of the hallucinogenic mycelium.  We also give directions
  30.  for setting up in a small workroom a large scale psilocybin factory
  31.  which can produce at least 5,000 doses of the drug every week.
  32.  
  33.  
  34.  
  35.                           PSILOCYBIN AND THE LAW
  36.  
  37.  
  38. The present drug laws are a pathetic mess.  The old adage that ignorance
  39. of the law is no excuse becomes a ludicrous statement when the laws 
  40. themselves are rooted in ignorance.  One classical example of this is
  41. the classification of the stimulant Cocaine as a narcotic.  One is 
  42. reminded of the King in Alice in Wonderland who made up his own language
  43. as he went along with total disregard for the accepted definitions of
  44. words.  I will not even go into the question of whether any law enforcement
  45. agency has the moral or Constitutional right to dictate what substances
  46. we may or may not take into our own adult bodies.  Any modern individual
  47. whose mind is not immersed in the slavish dung pit of Dark Age unreasoning
  48. knows that reliable education - not criminal penalization - is the answer
  49. to whatever drug problems exist.  Nevertheless, we must contend 
  50. realistically with the powers that unfortunately be at this time. They are
  51. the ones with the badges, guns, gavels and goons.
  52.  
  53. Because of the afore mentioned ignorance of our lawmakers it is difficult
  54. to determine how the use of certain hallucinogenic substances would be
  55. treated in the courts.  Possession of psilocybin and psilocin (misspelled
  56. in the U.S. Code as psilocyn) is a felony under Title 21, Section I, (C)
  57. of the United States Code (1970 Edition).  Psilocybe Mexicana is also
  58. illegal.  There was sufficient ignorance on the part of the lawmakers
  59. not to include the many other mushroom species containing psilocybin
  60. and psilocin.  Theoretically the possession of any psilocybin bearing
  61. mushroom would be the same as possessing the alkoloid itself.  But
  62. when it comes to prosecution it does not necessarily work like that.
  63. Lysergic acid amides, which occur in morning glory seeds, stems, and
  64. leaves are also illegal, but there is no way to prevent gardeners from
  65. raising this ornamental flower.  It is also illegal for anyone in the
  66. USA to possess mescaline.  Peyote, which contains mescaline, is legal 
  67. for bonafide members of the Native American Church when used ritual-
  68. istically, but no member may possess extracts of the cactus or the drug
  69. mescaline.  Peyote is illegal for non-members, but San Pedro and several  
  70. other species of Trichocereus cacti also contain mescaline and are 
  71. available from many legitimate cactus dealers.  It would be clearly
  72. illegal for anyone to extract the active principles from any of the above
  73. mentioned plants.  And it would be illegal for anyone to extract
  74. psilocybin and psilocin from mushrooms or mycellium as described in this
  75. guide.  Anyone found operating a large scale mycelium farm could very
  76. easily be prosecuted for intent to manufacture psilocybin and psilocin.
  77. There are also many different state laws which must be considered before
  78. doing anything psilocybin bearing mushrooms.  There are, however many 
  79. Nations which have no laws regarding these substances.  We are not judges
  80. or attorneys and are not trying to offer clear interpretations of the
  81. law.  Rather we have mentioned these points to give some indication
  82. of the legal pitfalls which surround the application of the activities
  83. described in this guide.  Furthermore, laws may have changed for better
  84. or for worse.  We, the author and publisher, are not recommending or 
  85. endorsing the application of the information in this guide especially
  86. in places where there are laws proscribing these substances.  We offer
  87. this information for the sake of pure knowledge because it is our
  88. Constitutional right to do so. We do not encourage the violation
  89. of any existing laws.
  90.  
  91.  
  92.          
  93.  
  94.                         FINDING THE MUSHROOM
  95.  
  96.  
  97. All it takes is one mushroom or a few spores and from this one can
  98. quickly develop a culture that will continue to produce as much
  99. psilocybin as one desires for years to come.  Because the common
  100. San Ysidro mushroom, psilocybe cubensis ..Singer (Formerly
  101. stropharia cubensis  ..Earl) is the most easily obtainable, the most
  102. readily cultivated, most disease resistant, and psychoactively 
  103. strongest species we have geared our instructions to it's use.  There
  104. are, however, numerous other species which contain psilocybin.  In 
  105. case one of these is all that is available, we give for several of these
  106. pertinent information such a relative potency, where and when to find
  107. specimens, what growing conditions (medium, temperature, lighting, etc.)
  108. it favors and how resistant it is to contamination.  The states, provinces,
  109. and regions named are by no means the only places where the species is to 
  110. found.  They are places in which there have been numerous reports of 
  111. findings.  They are given here to give a general idea of the type of
  112. terrain and climate the species favors.  In cases where ideal cultivation
  113. temperatures and growing conditions are not given much can be surmised by
  114. considering the environment in which that species thrives.
  115.  
  116. Psilocybe cubensis can be found in many parts of the United States,
  117. Mexico, Colombia, Australia, and even Southeastern Asia.  It is usualy
  118. found growing on or near cow dung in pastures during warm rainy periods
  119. from February to November. There are several species of mushroom which
  120. occur on cow dung, but fortunately none of these bear much resemblance
  121. to the San Ysidro.
  122.  
  123. There are numerous toxic mushrooms growing around us.  Some of these could
  124. be mistaken for some of the other psilocybin fungi mentioned in this
  125. guide.   It is essential that the mushroom hunter learn to use an 
  126. identification key.  A key is a listing of the various features which
  127. will positively identify a given species. If a specimen does not confirm
  128. in every respect to the key, it must not be used.  There are several
  129. excellent keys to be found on most library shelves.  One that we 
  130. recommend is "Keys to Genera of Higher Fungi" by R. Shaffer, 2nd ed.
  131. (1968) Published by the University of Michigan Biological Station at
  132. Ann Arbor.  We also recommend a thorough reading of the most helpfull
  133. book "Poisonous and Hallucinogenic Mushrooms" by Richard and Karen
  134. Haard, available for $3.95 from Nature Study Institute, PO Box 2321,
  135. Bellingham, Washington 98225. It is further suggested that after 
  136. identifying the specimen it should be brought to an expert mycologist
  137. to be absolutely certain of it's identity.
  138.  
  139. Many books on hallucinogenic mushrooms suggest a simple test for 
  140. psilocybian species which involves breaking the flesh of the specimen
  141. and waiting about 30 minutes for a blueing reaction to take place. The
  142. blueing is due to the oxidization of indole based substances in the 
  143. fungus.  Although it is true that most of the psilocybin-bearing
  144. mushrooms will respond positively to this test, other species may do
  145. the same.  The poisonous Eastwood Boletus blues upon exposure of the 
  146. inner tissues to oxygen as well as does any psilocybin mushroom.
  147. Another test which is often given in mushroom manuals is treating the
  148. exposed tissues with Metol, a chemical used in photo developers. It
  149. hastens the blueing of psilocybin mushrooms, and supposedly one can do
  150. a blueing test with it in a few minutes that would otherwise take 30
  151. minutes or more.  Any mushroom, however, which contains indolic 
  152. substances of any sort will respond positively to this test. Since
  153. indole-based amino acids such as tryptophan are found in most living
  154. organisms this test is rather useless.
  155.  
  156. There is actually no field test for psilocybin mushrooms. There is 
  157. however, a relatively simple test for the presence of psilocin and
  158. psilocybin that can be carried out at home by anyone who has some 
  159. familiarity with paper chromatography. The mushroom sample is dried,
  160. pulverized, and extracted into a small amount of unheated methanol by 
  161. shaking for half an hour.  After the debris in the methanol has 
  162. settled the paper is spotted with the top fluid in a zone about 2mm.
  163. After treating the the spotting zone with water saturated butanol for
  164. about two hours, the solvent front 7-8 cm from the spotting zone would
  165. contain the psilocin and psilocybin if they were present in the specimen.
  166. After drying the paper with a hair dryer on warm, this outer zone is
  167. sprayed lightly with a saturated solution of p-dimethyl-aminobenzaldehyde
  168. in alcohol and then again with 1 N hydrochloric acid.  The paper is then
  169. dried again as before.  Where psilocybin is present a reddish color will
  170. develop.  The presence of psilocin will be indicated by a blue-violet
  171. zone.
  172.  
  173.  
  174.  
  175.                    DATA ON VARIOUS PSIOCYBIAN SPECIES                       
  176.                    
  177.  
  178. CONOCYBE CYANOPES:
  179. Found from May through September usualy in dense shade scattered among
  180. mosses, and in wet soil around bogs, swamps, and ditches in the
  181. northwestern USA and as far east as Michigan.  Carpophores grow well
  182. in sphagnum moss having a range of pH 7-8.
  183.  
  184. COPELANDIA CYANESCENS:
  185. Found in early summer through late autumn scattered, grouped, or clustered
  186. on cow dung, or rich soil in Florida and other southern states.  Spores
  187. germinate easily easily on all agar media.  Optimum growth occurs on
  188. MEA at 80 degrees F.  Carpophores can be produced on uncased compost
  189. or on rye.
  190.  
  191. PANAEOLUS FOENISECII:
  192. (Also known as PANEAOLINA FOENISECII or PSILOCYBE FOENISECII, and commonly
  193. known as haymower's mushroom or harvest mushroom)
  194. Found in late spring and early summer, or in July, August, and September
  195. during cool, wet seasons scattered or grouped in large numbers on lawns,
  196. pastures, and other grassy places throughout the USA and in Quebec.  Tests
  197. on specimens found in Washington revealed no psilocybin, but eastern
  198. specimens were potent.
  199.  
  200. PANAEOLUS SPHINCTRINUS:  
  201. Found in summer and autumn in small groups in forests, pastures, fields,
  202. and roadsides almost always on cow dung in many temperate parts of
  203. the world.
  204.  
  205. PANAEOLUS SUBALTEATUS:
  206. Found from spring to autumn grouped or clustered often in rings up to
  207. two feet in diameter on open ground, freshly manured lawns, straw piles,
  208. all types of compost, dung piles, and roadsides in Ontario and throughout
  209. the USA (especially in Massachusetts, Maryland, New York, Ohio, Michigan,
  210. Washington, and Oregon).  Optimum growth on MEA is at 86 degrees F.
  211. It occasionally occurs as a weed mushroom in commercial mushroom houses.
  212.  
  213. PHOLIOTINA CYANOPODA:
  214. Found in August through September solitary to clustered on lawns in such
  215. diverse parts of the USA as New York, Washington, and Colorado.
  216.  
  217. PSILOCYBE BAEOCYSTIS:
  218. Found in autumn and winter, solitary, grouped, or clustered on earth, 
  219. lawns, mulch, and decomposing forest wood near scattered trees especially
  220. conifers - in western Oregon and Washington.  It does well on Agar media 
  221. at 77 degrees F.  This is a potent species containing Psilocybin, psilocin,
  222. baeocystin, and nor-baeocystin.  Perhaps it is because of the latter two
  223. alkaloids that it is the most visually hallucinogenic of the psilocybin
  224. mushrooms.  There is a report that in 1960 a six-year old boy died after
  225. eating a large number of these mushrooms.  There has never been any other
  226. indication that these alkaloids are dangerous.  Until there is further
  227. clarification of this question, we advise that anyone using this species
  228. proceed with caution by starting with small doses and progressing gradually
  229. to larger ones.  This is especially important when using the extracted
  230. crude alkaloids which may contain large concentrations of the baeocystin
  231. alkaloids.
  232.  
  233. PSILOCYBE CAERULESCENS:
  234. Found in the summer during rainy season, grouped or clustered but 
  235. rarely solitary, mostly in shady places on soil, sugar cane mulch,
  236. recently turned earth or stream banks - in Alabama, northern Florida
  237. and Mexico.  The Mexican variety P. CAERULESCENS var. MAZATECORUM is
  238. known locally as "Durrumbe", which means "landslides."  There it is
  239. often found among landslides, or near corn or coffee plantations.
  240. The mycelium does best on MEA at 81 degrees F.  Thermal death occurs
  241. at 95 degrees F.  It is almost impossible to produce carpophores
  242. on sterilized rye medium.  They can be grown on vegetable compost in dim
  243. light, but the incubation period is long (55-85 days). Although this 
  244. species is resistant to white mold it's long incubation period leaves it
  245. prone to other diseases.  It is not one of the more potent species.
  246.  
  247. PSILOCYBE CAERULIPES:
  248. Found in summer and occasionally autumn solitary or clustered on 
  249. decomposing logs and debris of hardwood trees (especially birch and
  250. maple) in New York, New England states, Ohio, Michigan, North Carolina,
  251. Tennessee and Ontario.
  252.  
  253. PSILOCYBE CUBENSIS var. CYANESCENS ..SINGER (formerly STROPHARIA CUBENSIS
  254. ..EARL):
  255. Found from February to November in compact groups in clearings outside
  256. forest areas, on cow dung, or horse dung, in rich pasture soil, on straw,
  257. or on sawdust/dung mixture in Mexico, Cuba, Florida and other southern 
  258. states.  It grows well on MEA at 86 degrees F.  Carpophores appear in
  259. 4-8 weeks.  Thermal death occurs at 104 degrees F. Carpophores larger
  260. than wild specimens can be produced by inoculating vegetable compost in
  261. clay pots with agar grown mycelium, casing with silica sand/limestone
  262. mix, and incubating 4-6 weeks in daylight at 68 degrees F.  It does
  263. poorly in darkness.  It is a potent mushroom and very resistant to
  264. contaminants.
  265.  
  266. PSILOCYBE CYANESCENS: 
  267. Found in autumn scattered, grouped, or clustered in woods, on earth,
  268. among leaves and twigs, and occasionally on decomposing wood - in
  269. northwestern USA.
  270.  
  271. PSILOCYBE MEXICANA:
  272. Found from May to October isolated or sparsely at altitudes from 4500 to
  273. 5500 feet, especially in limestone regions, among mosses and herbs, along
  274. roadsides, in humid meadows, in cornfields, and near pine forests in
  275. Mexico.
  276.  
  277. PSILOCYBE PELLICULOSA:
  278. Found September to December scattered, grouped, or clustered on humus and
  279. debris, in or near conifier forests in northwestern USA and as far south
  280. as Marin County, California.  This is a small but potent species.
  281.  
  282. PSILOCYBE QUEBECENCIS:
  283. Found from summer to late October scattered in shady areas at forest
  284. edges, on sandy soil containing vegetable debris regularly inundated
  285. by river flooding, and on decomposing wood and debris (especially birch,
  286. alder, fir, and spruce) in the Quebec area.  It thrives at lower 
  287. temperatures than other psilocybe species and produces carpophores at 
  288. air temperatures of 43 to 59 degrees F.
  289.  
  290. PSILOCYBE SEMILANCEATA:
  291. Found August through September often in large groups on soil, among
  292. grasses, in clearings, pastures, meadows, forest edges, open conifier
  293. woodlands, and on roadsides - but never on dung - in New York, northern
  294. USA, British Columbia, and Europe.  Generally regarded as one of the less
  295. potent species, but is sometimes quite potent.
  296.  
  297. PSILOCYBE STRICTIPES:
  298. Found in October rather clustered on soil or on decomposing wood and
  299. debris, on conifiers and some other trees in northwestern USA (especially
  300. in Oregon).  It closely resembles P. Baeocystis, but has a longer stem.
  301. It tends to be as visually hallucinogenic as that species and probably
  302. contains the same or similar baeocystin alkaloids.
  303.  
  304. PSILOCYBE SYLVATICA:
  305. Found in September and October in small compact but unlustered groups
  306. in woods on leaf mold, debris (especially beech wood), around stumps
  307. and logs, but not usually on them - from New York to Michigan and as
  308. far north as Quebec and Ontario.  This mushroom is small and is often
  309. mistaken for P. Pelliculosa.
  310.  
  311.  
  312. The species discussed above are only some of the more commonly known ones
  313. with hallucinogenic properties.  There are recognized among the psilocybin
  314. bearing mushrooms 40 species of Conocybe usually ocuring in forests,
  315. pastures, gardens, dung areas, sandy soil, ant hills, decayed wood, and
  316. charcoal and having a cosmopolitan range; 20 species of Panaeolus found on
  317. soil and dung and having a cosmopolitian range; 40 species of Psilocybe
  318. found on soil, moss clumps and organic substrata such as dung, rotting 
  319. wood, bagasse, and peat ranging from the artic to the tropics; and 9
  320. species of Stropharia found on soil, dung and sometimes on leaf mulch
  321. and rotting wood and having a fairly cosmopolitian range.
  322.  
  323.  
  324.  
  325.                          PURE CULTURE TECHNIQUE
  326.  
  327. The most difficult part of psilocybin mushroom cultivation is the
  328. observance of the rules of pure culture technique.  These are the 
  329. sanitary code of mushroom cultivation.  There are usually many varieties
  330. of bacteria and fungal spores in our environment; floating in the air,
  331. clinging to our hands and clothing, issuing from our mouths with every
  332. exhalation.  Extreme measures must therefore be taken to keep these out
  333. of our mycelial cultures, which they would rapidly overrun.  The following
  334. points should be diligently observed. Work in a clean, uncluttered, dust
  335. free room.  Immediately before work wash the work table and spray the room
  336. with disinfectants.  Scrub arms, hands, and nails with disinfectant soap.
  337. Wear simple clothing.  A freshly cleaned short-sleeve T-shirt is ideal.
  338. Gargle with antiseptic mouthwash and cover the mouth and nose with a clean
  339. cloth or disposable surgery mask.  Cover the hair with a surgical cap or
  340. shower cap.  Allow no drafts in the room. close all doors and stuff all
  341. door jambs.  Let no flies, animals, or unnecessary people in the room. Let
  342. only sterilized equipment touch the medium or inoculum.  Don't lean over
  343. your work.  Avoid all swift movements that may cause a draft.  If possible
  344. have a hood constructed around the work table or a screen or curtain
  345. surrounding it.  Be neat and keep all materials within reach.  Keep all
  346. equipment about three feet away from the work. Do not permit anyone to
  347. enter the room while work is in progress.
  348.  
  349.  
  350.                            
  351.                               STERILIZATION
  352.  
  353. All utensils used in the cultivation of mycelia must be sterilized by
  354. heat before use.  Glassware must be boiled in water for 30 minutes.
  355. Metalware used repeatedly must be held in a flame until glowing and
  356. then allowed a moment to cool before making contact with any cultures
  357. or specimens.  When the inoculation loop has been used to transfer a
  358. fragment of mycelium it must be flame sterilized again before touching
  359. the next fragment.  All medium containers must be sterilized after the
  360. medium has been poured. This process is known as autoclaving. Containers
  361. no more than half full with medium are placed in a canning type pressure
  362. cooker.  The lids of these must be loose enough to allow escape of
  363. internal pressures. Otherwise the containers may crack. Seal the lid of
  364. the pressure cooker.  Keep the stopcock valve open. Using high heat bring
  365. the cooker to boiling so that thick steam comes through the vent. Close
  366. the stopcock and let the pressure rise to 15-20 pounds. (250 Degrees F.)
  367. for 30 minutes.  This should be enough to destroy any foreign spores or
  368. lifeforms.  Any higher temperature or longer period would cause the 
  369. dextrose or maltose sugars to carmelize.  This would inhibit growth and
  370. psilocybin production of the mycelium.  When the autoclave period is up
  371. turn off the heat and let the cooker cool to room temperature.  Do not
  372. release the stopcock until everything has thoroughly cooled or the 
  373. sudden change in pressure will cause the containers to boil over. Discard
  374. any containers that have cracked during sterilization.  Keep all containers
  375. of medium at room temperature for three days to see if any foreign
  376. molds develop.  If they do occur discard the medium in the contanminated
  377. jars and thoroughly clean and sterilize such jars before using again.
  378.  
  379.  
  380.                           MAKING A SPORE PRINT
  381.  
  382. A spore print is a collection of spores on a flat surface. It can serve         
  383. several purposes.  It can be used to assist identification of the
  384. specimen by observing its color or if made on a glass slide, by 
  385. studying the shapes of the spores under a microscope.  Mycological
  386. identification keys include descriptions of spore prints and microscopic
  387. spore features for different species.  Spore prints are also the standard
  388. method of collecting spores for later germination on agar media. A print
  389. from a single mushroom cap contains millions of spores.  Many mushroom 
  390. lovers are now making spore prints on paper from species available in 
  391. their locales and mailing them to cultivators in other areas where such
  392. species are not found.  Secret spore exchange correspondence clubs are
  393. becoming quite the vogue and will probably be more common in the very
  394. near future. A word of caution regarding this practice should be given,
  395. however.  Do not assume that spores received in this manner are from the
  396. species the sender claims they are.  If the sender has misidentified the 
  397. specimen and the recipient cultivates and ingests mycelia or extractions
  398. therefrom, the result may be disasterous.  Furthemore, I would not put it
  399. past some anti-drug fanatic to purposefully disseminate spore prints of
  400. dangerous mushrooms to amateur cultivators.  This could result in sickness
  401. and death for thousands of persons.
  402.  
  403. To make a spore print take a mushroom with it's cap fully opened and gills
  404. exposed.  With a sharp sterilized blade cut off the stem as close to the
  405. gills a possible.  Place the cap gills-down on a clean, white sheet of 
  406. paper, or on a sheet of glass that has just been swabbed with alcohol, or
  407. on two or four sterilized microscopic glass slides. Cover the cap with a
  408. clean, inverted bowl or bell jar to prevent drying of the cap and intrusion
  409. of foreign organisms.  Let this stand as such for 24 hours. If a good spore
  410. print has not been formed after this time, tap the cap lightly with the 
  411. flat side of a knife or spatula.  This should shake loose many spores. If
  412. the print is made on glass, cover it with another glass sheet immediately
  413. after removing the cap to prevent contamination.  If microscopic slides
  414. are used, place two face to face and seal the edges with tape. If paper
  415. is used. fold it several times so that the print is well inside.
  416.  
  417.  
  418.  
  419.                           
  420.                           PREPARATION OF MEDIA
  421.  
  422.  
  423. PDA (Potato Dextrose Yeast Agar):  Wash 250 grams of unpeeled potatoes
  424. and slice them 1/8 inch thick.  Wash these several times in cool tap
  425. water until the water is clear.  Drain the slices in a collander and rinse
  426. once with distilled water.  Cook the potato slices in distilled water until
  427. tender. Strain the cooking liquids through a flannel cloth or several layers
  428. of cheesecloth and collect the liquid in a flask. Rinse the boiled potatoes
  429. several times with distilled water, add these rinse waters to the liquid in
  430. the flask, and discard the potatoes. Add enough distilled water to the flask
  431. to make one liter.  Bring the liquid to a boil and add 15 grams of agar, 10
  432. grams of dextrose, and 1.5 grams of yeast extract.  The agar must be added
  433. slowly and carefully to prevent boiling over.  While the liquid is hot, pour
  434. it into petri dishes or other culture containers. Each should be filled half
  435. way.
  436.  
  437. PDY (Potato Dextrose Yeast broth): PDY broth is made in exactly the same
  438. manner except the agar is omitted. Mason jars are filled half way with the
  439. hot or cool liquid.
  440.  
  441. MEA (Malt Extract Agar): To one liter of gently boiling water (distilled)
  442. add 20 grams of malt extract, 20 grams of agar (slowly, carefully to prevent
  443. boiling over), 100 mg of potassium phosphate dibasic (K2HPO4), and 100 mg
  444. of calcium carbonate.  While still hot pour the liquid into the culture
  445. dishes.
  446.  
  447.  
  448.  
  449.                               EQUIPMENT
  450.  
  451.  
  452. Most of the equipment described in this guide is readily available at
  453. reasonable prices. One quart size mason jars can be purchased from many
  454. stores including Sears for about $2.98 a dozen. If a large scale Psilo-
  455. cybin farm is being set up, a greater number of jars could be obtained
  456. from a Wholesale outlet or bought at a discount from the retailer.
  457. Pipettes, inoculating loops, petri dishes, agar, and other materials
  458. (including pre-mixed media) are found at many scientific supply houses or
  459. can be ordered from Difco Laboratories, Inc., Detroit, Michigan 48201. 
  460.  
  461. If Petri dishes are not on hand, there are several other containers that
  462. can substitute.  Baby food jars 1/4 filled with agar media are excellent.
  463. Test tubes can be filled 1/3 with hot agar medium, stopped with cotton,
  464. autoclaved and allowed to cool while standing at a 17 degree angle. These
  465. are known as slants and permit a maximum surface area. A wooden rack can 
  466. be easily constructed to hold slants at this angle. Baby bottles with a
  467. steam sterilizer can be bought almost anywhere. These come in sets of nine
  468. or ten bottles. The tip of the rubber nipple should be cut off and a wad
  469. of clean cotton pulled through from the inside leaving about 1/2 inch 
  470. sticking out.  The bottles are filled 1/3 with agar medium. After sterili-
  471. zing the bottles should be kept at a 17 degree angle.  A large pressure
  472. cooker - the type used for canning and jarring - can be used for autoclaving
  473. mason jars of broth medium.
  474.  
  475.  
  476.  
  477.                           STARTING THE CULTURE
  478.  
  479.  
  480.  
  481. Upon obtaining one or more specimens of a psilocybin bearing mushroom one 
  482. can begin to cultivate as much of the hallucinogen as is desired. Any part
  483. of the fungus can be used for inoculation. If the spores are used, consider-
  484. ation must be given to the natural life cycle of the mushroom. A single cap
  485. contains millions of spores, and any one of these will germinate in the
  486. medium to form a mycelium. But this mycelium will consist of what is known
  487. as monokaryotic tissue.  Such a mycelial organism will grow for a while,
  488. but unless it mates with another compatible monokaryotic mycelium and forms
  489. a dikaryotic structure it will eventually perish. To develop a culture from
  490. spores proceed as follows:  Scrape the spores from the print into about 10
  491. ml of sterilized water. Shake well. Add 90 ml of sterilized water and shake
  492. again.  There will be millions of spores in this solution. Have ready several
  493. petri dishes or other suitable containers as described previously containing
  494. sterilized agar medium. Lift the lid slightly on each container and with a
  495. sterilized pipette or syringe place a drop of this spore water on three or
  496. four different parts of the agar surface, then cover the container immediat-
  497. ely. Let the dish stand at room temperature for 3-5 days. Radial growths
  498. of monokaryotic mycelium will occur at each inoculation point. When any two
  499. mycelia have grown to the point of making contact with each other mating
  500. (somatogamy) has taken place and within a few days these united mycelia will
  501. have become dikaryotic organisms. Any portion of this mycelial tissue can
  502. now be used to seed new cultures as described later.
  503.  
  504. If a portion of one of the carpaphores gathered in the field is used to
  505. inoculate the agar, mating is not required. The tissue of mature fungus is,
  506. of course, already dikaryotic. To avoid contamination only inner tissue is
  507. used. Place the mushroom cap gills-down on a clean work area at least three 
  508. feet away from any equipment. Wipe all dirt an slime from the cap with a
  509. Q-tip and swab it's whole surface with a seven percent iodine solution.
  510. Pin the cap to the Table top by inserting three disecting needles at
  511. equilateral points.  Sterilize an X-acto blade in a flame, let it cool for
  512. a moment, then carve the outer skin of the mushroom. Cut out tiny pieces of 
  513. the inner mushroom flesh each the size of a match head. Spear each piece 
  514. with the blade point, raise the lid of the petrie dish slightly, press the
  515. tissue firmly into the agar surface, and close the lid immediately. Place
  516. all dishes so inoculated on the incubation shelf at room temperature. The
  517. mycelium must breath as it grows, so do not cap the lids too tightly.
  518. When the radial growth of the mycelia appear on the agar surface (3-5 days)
  519. these stock cultures are ready for transferring to the broth jars.  If any
  520. stock cultures are not going to be used immediately, tighten their lids and
  521. place them under refrigeration. They can be kept this way for about a year.
  522.  
  523.  
  524.                     RAISING CROP CULTURES OF MYCELIA
  525.  
  526.  
  527. The task now is to select the most vigorous appearing mycelia in the dishes.
  528. This means the largest and fastest growing specimens and, of course, those
  529. not contaminated by foreign molds. Contaminants are not difficult to detect
  530. because their appearance differs greatly from that of the mycelia. Mycelia
  531. are pure white fibrous mats sometimes having a light bluish tinge.
  532.  
  533. Contaminants may appear as rapid-growing, tiny, white circular spots with
  534. blue-green centers, or as surface scums or fuzzy clusters of either gray,
  535. black, yellow, green, or blue color.  If any contamients appear in any of
  536. the culture dishes, discard those cultures.  When the dishes containing
  537. the choicest mycelia have been selected the mycelia can be transferred from
  538. the agar-based stock cultures to the liquid broth cultivation jars.  These
  539. jars should have been prepared and sterilized three days before transferring
  540. and allowed to stand at room temperature during this time to test the effec-
  541. tivness of sterilization by observing if contaminates appear. Discard all
  542. broths which contain growths. The uncontaminated jars are now ready for 
  543. inoculation. Spray the room and clean the work area as described under
  544. pure culture techniques. Also spray the outside parts of the stock dishes
  545. and culture jars. Lift the lid of a stock dish just enough and pick up a
  546. fragment of mycelium with an inoculation loop that has been flame sterili-
  547. zed and allowed a moment to cool. Lift the cover of the jar, place the 
  548. mycelium fragment in the broth and cover the jar immediately. Repeat this
  549. until all jars have been inoculated. Refrigerate all unused stock cultures.
  550. Tighten the jar covers and shake well to disperse the inoculum throughout
  551. the broth. This also aerates the medium; the mycelium needs oxygen for life
  552. support and growth. Loosen the lids again and place the jars on the growing
  553. shelf for 10-12 days at 70-75 degrees F. If other species than Psilocybe
  554. cubensis are used, adjust the temperature accordingly. Every 2-3 days tighten
  555. the jar covers, shake to aerate and disperse mycelium, reloosen the covers,
  556. and return the jars to the shelf.
  557.  
  558. The process of growth can be followed with a saccharimeter. The maximum 
  559. growth and highest percentage of psilocybin occurs about four days after all
  560. of the broth's sugar content has been used up.  The mycelium should be 
  561. harvested at this time. Any jars that cannot be harvested on that day should
  562. be refrigerated until this can be done.
  563.  
  564.  
  565.  
  566.                           HARVESTING AND DRYING
  567.  
  568.  
  569. Filter the medium of each jar through a clean flannel cloth, collect the
  570. mycelial material from the cloth, and place it in a pyrex baking dish. Do
  571. the same with each jar of mycelium until each baking dish is about 1/3 full
  572. with mycelia. Dry these in an oven at no higher temperature than 200 deg F.
  573. Use an oven thermometer. Do not rely upon the temperature indications on
  574. the oven knob as these may vary from accuracy. Check the baking dishes
  575. periodically. When the material first appears to have dried shut off the
  576. heat and let the dishes stay in the oven until it has cooled. This ensures
  577. the evaporation of residual moisture.  Each cultivation jar should yield
  578. 50-100 grams of wet mycelium.  Fresh mycelium contains about 90 percent
  579. water, so this much would dry down to 5 to 10 grams of crumbly material.
  580. Each baking dish would contain a dozen or more mycelia.
  581.  
  582.  
  583.  
  584.                                 EXTRACTION
  585.  
  586.  
  587. Crumble and pulverize the dried mycelial material and combine each 100 mg
  588. of this material with 10 ml of methanol. Place the flask in a hot water
  589. bath for four hours. Filter the liquids with suction through a filter paper
  590. in a buchner funnel with Celite to prevent clogging. Collect and save the
  591. filtrate liquids.  Heat the slurry (the mush in the filter paper) two more
  592. times in methanol as before, filter, and accumulate the liquids of the three
  593. extractions. To be certain that all of the alkaloids have been extracted do
  594. a small extraction with a portion of the used slurry and test with Keller's
  595. reagent (glacial acetic acid, ferrous chloride, and concentrated sulfuric
  596. acid). If there is a violet indication, alkaloids are still present and
  597. further extraction is in order. 
  598.  
  599. In an open beaker evaporate the liquids to total dryness with a hot water
  600. bath or by applying a hair dryer. Be certain that all traces of methanol
  601. have been removed.  The remaining residue should contain 25-50 percent
  602. psilocybin/psilocin mixture. Greater purification can be achieved, but would
  603. require other solvents and chromatography equipment and is hardly necessary.
  604.  
  605. Each 100 grams of dried mycelium should yield about 2 grams of extracted
  606. material. This should contain at least 500 mg of psilocybin/psilocin mixed
  607. or about fifty 10 mg doses. Theoretically psilocin should have the same
  608. effect upon the user as psilocybin. The only difference between the two is
  609. that the later has a phosphate bond which disappears immediately after
  610. assimilation in the body. In other words, in the body psilocybin turns into
  611. psilocin.  Psilocybin is a fairly stable compound, but psilocin is very
  612. susceptible to oxidization. It is best to keep the extracted material in a
  613. dry air tight container under refrigeration. A sack of silica-gel can be
  614. placed in the container to capture any moisture that may enter.
  615.  
  616.  
  617.  
  618.                                 DOSAGE
  619.  
  620.  
  621. The standard dose of psilocybin or psilocin for a 150 lb person is a
  622. 6-20 mg dose. We will figure the average dose as 10 mg. The crude alkaloid
  623. extraction process given here yields a brownish crystalline powder that is
  624. at least 25 percent pure. Each mason jar should contain at least 50 grams
  625. of wet mycelium. After drying this would be about 5 grams of material. The
  626. crude material extracted from this should contain 25-30 mg of psilocybin/
  627. psilocin or roughly 2-3 hits. This yield may very to some extent depending
  628. upon several factors. Many of these species contain less of these alkaloids
  629. than dose Psilocybe cubensis and the alkaloidal content of this species may
  630. very in different strains. Cultivation conditions have alot to do with yield
  631. too. Higher temperatures (75 degrees F.) cause more rapid growth but lesser
  632. psilocybin content than do lower temperatures (70 degrees F.)  One must test
  633. each new batch of extracted material to determine the proper distribution
  634. of dosages.  Depending on the potency of the mycelia and how well the 
  635. extraction was conducted the dose may range between 25 and 100 mg. Also
  636. bear in mind that the dose varies for different individuals.
  637.  
  638.  
  639.  
  640.                          LARGE SCALE PRODUCTION
  641.  
  642.  
  643. The techniques and procedures described in this guide can be employed to
  644. cultivate modest supplies of psilocybin for personal use, or they can be
  645. expanded to apply to the large scale production of many thousand doses per
  646. week.  A small 10 x 15 foot room with standard 8 foot ceilings can be set
  647. up to produce an unending yield of at least 5000 doses per week. The stock
  648. culture shelves here are 1 foot deep and 5 feet long. Each could hold
  649. twenty 15 cm petri dishes. If shelving is spaced six inches apart, there
  650. can be as many as 16 shelves stacked in this space. This would allow for
  651. up to 300 stock culture dishes going at one time.  The crop culture shelves
  652. can be stacked ten inches apart, accommodating one quart size mason jars and
  653. giving ten levels.  With the dimensions of the room as mentioned this much
  654. shelving could hold about 2800 jars (3 deep and 3 per running foot). The
  655. entire room - walls, ceiling, and shelving - should be painted with a white,
  656. glossy kitchen enamel. This is not only an important sanitary measure, but
  657. also improves the efficiency and even distribution of light in the room.
  658.  
  659. Lighting should be provide by a few banks of wide spectrum fluorescent tubes
  660. fairly evenly distributed across the ceiling and turned on for 10-12 hours
  661. regularly each day.  These are great dust catchers, however, and must be
  662. wiped clean periodically. The work table should also be painted with a hard
  663. smooth, white finish. If the table is metal, a small, clean cutting board
  664. must be provided on which to pin down mushroom caps when disecting them.
  665. Shelf boards on the wall next to the table may be extended above the table
  666. to provide space for storage of work equipment and ready containers. A hood
  667. should be constructed around the table to protect it from dust, etc. A fume
  668. hood with a flu vent and spark-free exhaust fan should be constructed over
  669. the extraction area to remove toxic and combustible methanol vapors.
  670.  
  671. Extraction is preferably conducted in another room. If the cultivation room
  672. is used for extraction while the cultures are growing, care must be taken
  673. that the heat from the extraction process does not alter the room temper-
  674. ature. The fume hood will help by carrying off most of the heat. A vinyl
  675. shower curtain should be hung around the work table to shield the area of
  676. breezes when anyone enters or exits the room. Another vinyl curtain can be
  677. hung just inside the entrance to serve as a dust trap. A person entering
  678. the room would close the door behind him before pulling the curtain aside
  679. - and vice versa on exiting. The floor should be white vinyl or asphalt
  680. tile or painted white and coated with verathane or polyurethane. There 
  681. should be no cloth or carpeting in the room except for a supply of clean
  682. worl clothing and surgical masks. The only other items in the room would
  683. be a stool at the work table, a three step ladder for reaching the upper
  684. shelves, and a small table on rollers on which to place jars and dishes
  685. when making the rounds of the shelves.
  686.  
  687. Unless one has a large staff of assistants it would be impossible to 
  688. inoculate 2800 jars in one work session. After getting used to the work
  689. one could do about 100 jars an hour.  The best procedure is to set up a
  690. continuous rotation of inoculations. Working about three hours a day about
  691. 235 jars could be inoculated each session. All 2800 jars could be inoculated
  692. in 12 days. Sections of shelving would be divided into groups of 235 jars,
  693. and these sections would be labled with the date and approximate time of
  694. inoculation.  The work schedule for cultivation would be as follows:
  695.  
  696.  
  697. DAY        INOCULATE        SHAKE                HARVEST        REINOCULATE
  698. ---------------------------------------------------------------------------
  699. Mon        Group A
  700. Tues             B
  701. Wed              C          Group A
  702. Thurs            D                B
  703. Fri              E          A and C
  704. Sat              F          B and D
  705. Sun              G          A, C, and E
  706. Mon              H          B, D, and F
  707. Tues             I          A, C, E, and G
  708. Wed              J          B, D, F, and H
  709. Thurs            K          A, C, E, G, and I
  710. Fri              L          B, D, F, H, and J
  711. Sat           Commence
  712.             Reinoculation
  713.              See Col. 5     C, E, G, I, and K      Group A       Group A-2
  714. Sun                         D, F, H, J, and L            B             B-2
  715. Mon                         E, G, I, K, and A-2          C             C-2
  716. Tues                        F, H, J, L, and B-2          D             D-2
  717. etc.                        etc.                       etc.            etc.
  718.  
  719.  
  720. This would represent the first 2 weeks of the continuous cultivation cycle.
  721. The continuation of this schedule is obvious: shaking every other day,
  722. harvesting approximately every 12 days, and resterilizing, refilling with
  723. fresh medium, autoclaving, and reinoculating the jars liberated by the days
  724. harvest. If the total number of jars is 2800, each group would consist of
  725. 235 jars. The same schedule could, of course, be adapted to any number of
  726. jars. Drying of the mycelia should be done within a few hours after harvest-
  727. ing. Otherwise enzymes in the material will begin to destroy the active
  728. alkaloids. Once dried the material can be stored in cool, dark, dry place
  729. until enough daily harvests have been accumulated to do an extraction. If
  730. the mycelia can not be dried right away it can be kept in a refrigerator for
  731. a day or two, or longer times in a freezer.
  732.  
  733.  
  734.  
  735.                      
  736.                   MAINTAINING A PERPETUAL PSILOCYBIN FARM
  737.  
  738.  
  739.  
  740. Fresh inoculum can come from stock culture dishes kept under refrigeration.
  741. If these should become depleted, healthy strains of mycelium from the crop
  742. cultures can be used to inoculate sterilized agar media in dishes. To do so
  743. shake the crop culture jar violently to break up the mycelium. Then transfer
  744. drops of the liquid into autoclaved petri dishes of unused agar medium with
  745. a sterilized pipette and let it grow as before. If this reinoculation of
  746. stock cultures from existing crops is continued over a long period of time,
  747. the strain will eventually weaken due to what is known as the senescence
  748. factor. To avoid this alternate the media used in the stock dishes. That is:
  749. if PDA is used the first time, use MEA the second time and PDA again the
  750. next time, etc.
  751.  
  752.  
  753.  
  754.                           RECOMMENDED READING
  755.  
  756.  
  757. If you cannot find these books in a bookstore, they can be ordered by mail
  758. from their publishers:
  759.  
  760. HOMEGROWN HIGHS  
  761. M.J. Superweed, 1972. High potency cultivation techniques for several 
  762. psychoactive plants including peyote, San Pedro, coleus, and morning glory;
  763. plus a special medium formula and practical method for maximum mcycelial
  764. growth and extra-high psilocybin yield. The formula can be used in 
  765. combination with the large-scale production methods in our guide.
  766. Send $1.50 plus .50 handling to: Flash Mail Order Post Express, 9926
  767. Haldeman Ave, Suite 3B, Philadelphia, Pa. 19115
  768.  
  769. PSILOCYBIN - MAGIC MUSHROOM GROWERS GUIDE.  O.T. Oss and O.N. Oeric, 1976.
  770. Excellent guide for those who wish to cultivate carpophores of Stropharia
  771. Cubensis. Nicely illustrated with black and white and color photographs.
  772. Send $4.95 plus .50 handling to: Flash Mail Order Post Express, 9926
  773. Haldeman Ave, Suite 3B, Philadelphia, Pa. 19115.
  774.  
  775. Two other highly recommended books - Keys to Genera of Higher Fungi and
  776. Poisonous and Hallucinogenic Mushrooms are discussed earlier in this
  777. guide.
  778.  
  779.  
  780.  
  781.  
  782.